Micropropagación clonal y enraizamiento ex vitro de tres cultivares de piña Ananas comosus (L. Merr.) del Chocó, Colombia

Autores/as

  • Miguel A. Medina Rivas, CO Grupo de investigación en Biotecnología y Recursos Fitogenéticos, Laboratorio de Cultivo de Células y Tejidos Vegetales, Universidad Tecnológica del Chocó «Diego Luis Córdoba», Quibdó, Chocó, Colombia
  • Hilda Rocío Mosquera, CO Grupo de investigación en Biotecnología y Recursos Fitogenéticos, Laboratorio de Cultivo de Células y Tejidos Vegetales, Universidad Tecnológica del Chocó «Diego Luis Córdoba», Quibdó, Chocó, Colombia
  • Cindy Lorena Aguilar Medina, CO Grupo de investigación en Biotecnología y Recursos Fitogenéticos, Laboratorio de Cultivo de Células y Tejidos Vegetales, Universidad Tecnológica del Chocó «Diego Luis Córdoba», Quibdó, Chocó, Colombia

DOI:

https://doi.org/10.18636/bioneotropical.v4i2.199

Palabras clave:

Cultivares, Cultivo in vitro, Micropropagación, Piña, Propagación masiva.

Resumen

Objetivos: Propagar masivamente tres cultivares de piña del departamento del Chocó, Colombia, Ananas comosus (L. Merr.). Metodología: Se multiplicaron in vitro brotes provenientes de ápices caulinares extraídos de hijos basales y de corona y se cultivaron en un medio de iniciación semisólido de Murashige y Skoog (MS,1962), que contenía: 4 mg. l-1 tiamina-HCl, 0,5 mg/l de ANA, 0,5 mg/l de IBA y 0,5 mg/l de 6-BAP y pH ajustado a 5,8; 10 g/l de carbón activado y posteriormente en un medio de multiplicación con cuatro tratamientos hormonales; (1) 0,3 mg/l de ácido naftalenoacético (ANA)+1,0 mg/l de bencilaminopurina (6-BAP), (2) 0,5 mg/l de ANA+1,5 mg/l de BAP, (3) 1,0 mg/l de ANA+3,0 mg/ l de 6-BAP, (4) 1,0 mg/l de ANA+3,0 mg/l de 6-BAP+2 mg/l de ácido giberélico (AG3). El enraizamiento se realizó ex vitro se plantaron en materas en un medio preparado con tierra de hormiga, arena fina y musgo en proporciones iguales (1:1:1), desinfestadas con formaldehido un mes antes del iniciado el proceso. Resultados: A los 90 días, el número de brotes y tamaño de los brote por explantes fue: cultivar 1 C1 (78,4±05) brotes y longitud del brote (2,5±0,03 cm); cultivar 2 C2: (85,7±0,5) brotes y longitud del brote (2,1±0,11 cm), Cultivar3 C3 (92,8±0,1) brotes y longitud del brote (1,6±0,07 cm). La mejor combinación de los reguladores de crecimiento fue de 1 mg/l de ANA y 3 mg/l de 6-BAP, lo cual indica que es necesaria la presencia de auxina y citoquinia para la brotación. El enraizamiento fue ex vitro y a los 90 días las plantas tenían en promedio de C1 (5,8±0,4) raíces y longitud de raíz (3,2±0,3 cm); C2 (5,4±0,1) raíces y longitud de raíz (3,9±0,8 cm); C3 (5,7±0,7) raíces y longitud de raíz (3,8±0,5 cm).

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Citas

Almeida de WA, de Matos AP, Souza A. 1995. Effects of benzylaminopurine (BAP) on in vitro proliferation of pineapple (Ananas comosus L. Merr.). Acta Hort. 425: 235-42.

Amin MN, Rahman MM, Rahman KW, Ahmed R, Hossain MS, Ahmed MB. 2005. Large scale plant regeneration in vitro from leaf-derived callus cultures of pineapple (Ananas comosus L. Merr. cv. Giant Kew). Int J Bot. 1: 128-32.

Blanco FH, Vargas TE, de García T, De García E. 2011. Micropropagación clonal de tres variedades de piñas nativas de la región amazónica mediante cultivo de yemas axilares y apicales. Inverciencia. 36 (6): 437-43.

Casale I, De García E. 1987. Multiplicación clonal acelerada de tres variedades de piña. ACEV. IV (2): 3-18.

CoHort Software. 1990. Bekerly: CoHort 2 Statistical Package. Coppens G, Leal F, Duval MF. 1997. Germoplasm resources of pineapples. Hort Rev. 21: 133-75.

Danso KE, Ayeh KO, Oduro V, Amiteye S, Amoatey HM. 2008. Effect of 6-Benzyl-aminopurine and naphtalene acetic acid on in vitro production of MD2 pineapple planting materials. World Appl Sci J. 3: 614-9.

Daquinta M, Benega R, Martínez T, Castillo R. 1995. Estaquillado de hojas de piña in vitro. Centro de Bioplantas, Instituto Superior Agrícola de Ciego de Ávila, Cuba. Centro Agrícola. 2: 82-7.

De García E, Garay A, Vargas TE, Blanco H. 2008. Micro- propagación clonal masiva de piña (Ananas comosus). Mem Inst Biol Exper. (UCV) 5: 181-4.

De Wald MG, Moore GA, Sherman WB, Evans MH. 1988. Production of pineapple plants in vitro. Plant Cell Rep. 7: 535-7.

Documento del Primer Simposio Internacional de Piñicultura. Bogotá. Memorias, 1993. p. 1-3.

Dolgov SV, Shushkova TV, Firsov AP. 1998. Pineapple (Ananas comosus Mess.) regeneration from leaf explants. Acta Hort. 461: 439-44.

FAO. 2009. Production of pineapple crops from Venezuela. FAO, Statistic Division. http://faostat.fao.org/site/567/ DestktopDefault.aspx?Page ID=567#ancor

Firoozabady E, Gutterson N. 2003. Cost-effective in vitro propagation methods for pineapple. Plant Cell Rep. 21: 844-50.

Firoozabady E, Moy Y. 2004. Regeneration of pineapple plants via somatic embryogenesis and organogenesis. in vitro Cell Dev Biol Plant. 40: 67-74.

Fitchet-Purnell M. 1993. Maximum utilization of pineapple crowns for micropropagation. Acta Hort. 334: 325-30.

Gallardo M. 1995. Biotecnología aplicada al cultivo de la piña. Maturín: Fondo Nacional de Investigaciones Agro- pecuarias (FONAIAP-LARA). 6 pp.

Garita H, Gómez L. 2000. Micropropagación de la variedad de piña Champaka F 153. Agron Costarric. 24: 63-73.

Griffith LP. 1998. Tropical foliage plants. Batavia: A Grower’s Guide. NY. Ball Publishing. 318 pp.

Khan S, Nasib A, Saeed BA. 2004. Employment of in vitro technology for large scale multiplication of pineapples (Ananas comosus). Pak J Bot. 36: 611-5.

Mathews VH, Ragan TS. 1979. Multiple plantlets in lateral bud and leaf explant in vitro cultures of pineapple. Scientia Hortic. 11: 319-28.

Medina MA, Mena R. 2011. Selección clonal de germoplasma élite de Anana comusus L. «piña de castilla del Chocó» para la obtención de material de siembra para el establecimiento de cultivos comerciales, vía cultivo in vitro. Rev Biodivers Neotrop. 1 (2): 122-5.

Mogollón N, Díaz JC, Hernández N. 2004. Multiplicación clonal y enraizamiento in vitro de Ananas comosus L. QueenAustralia. Rev Fac Agron. (LUZ) 21: 15-21.

Montilla de Bravo I. 1992. El cultivo de la piña en la región occidental. En: Tirado, M. (Ed.). Curso sobre fruticultura tropical. Maturín: Fondo Nacional de Investigaciones Agropecuarias (FONAIAP). Estación Experimental Monagas. 184 pp.

Murashige T, Skoog F. 1962. A revised meédium for rapid growth and bio-assays with tobacco tissue cultures. Physiol Plant. 15: 473-97.

Páez MG. 1998. Caracterización morfológica de especies silvestres de Ananas spp. Proc Interamer Soc Trop Hort. 42: 128-32.

Rahman KW, Amin MN, Azad MA. 2001. in vitro rapid propagation of pineapples clones (Ananas comosus L. Merr). Plant Tiss Cult. 11: 47-53.

Rodríguez Y, Mosqueda M, Companioni B, Arzola M, Borras O, Pérez MC, et al. 2002. Bioassay for in vitro differentiation of cultivar pineapples resistance levels to heart rot disease. in vitro Cell Dev Biol Plant. 38: 613-6.

Roostika I, Mariska I. 2003. in vitro culture of pineapple by organogenesis and somatic embryogenesis: its utilization and prospect. Bul Agro Bio. 6: 34-40.

Santos JR, Matos AP. 1995. Pine apple breeding for resistance to Fusariosis in Brazil. Rev Fac Agron. (Maracay) 21: 137-45.

Saucedo SG, Ramos EL, Varas E, Carmigniani F. 2008. Propagación clonal in vitro de piña (Ananas comosus L. Merr) variedades Champaka y Hawaiana. Cienc Tecnol. 1: 49-54.

Sepúlveda N, Murillo MV, Palacios A, Murillo W, Medina MA. 2008. Micropropagación clonal y enraizamiento ex vitro de Ananas comosus L. «piña Castilla del Chocó». Investigación Biodiversdad Dessarrollo. 27: 144-7.

Smith R. 2000. Plant tissue culture. Techniques and experiments. San Diego: Academic Press. 231 pp.

Sripaoraya S, Marchant R, Power JB, Davey MR. 2003. Plant regeneration by somatic embryogenesis and organogenesis in commercial pineapple (Ananas comosus L.). in vitro Cell Dev Biol Plant. 39: 450-4.

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Publicado

2014-07-30

Cómo citar

Medina Rivas, M. A., Mosquera, H. R., & Aguilar Medina, C. L. (2014). Micropropagación clonal y enraizamiento ex vitro de tres cultivares de piña Ananas comosus (L. Merr.) del Chocó, Colombia. Revista Biodiversidad Neotropical, 4(2 Jul-Dic), 133–140. https://doi.org/10.18636/bioneotropical.v4i2.199

Número

Sección

MANEJO Y CONSERVACIÓN

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