Propagación in vitro de Musa acuminata (Simmunds) plátano bocadillo del Chocó, Colombia, a partir del cultivo de meristemos apicales
DOI:
https://doi.org/10.18636/bioneotropical.v5i1.206Palabras clave:
Cultivo de tejidos, Meristemo apical, Musa acuminata, Plátano bocadillo.Resumen
Objetivos: Propagar brotes adventicios a partir de meristemos apicales de plátano bocadillo o «primitivo» Musa acuminata, mediante cultivo in vitro. Metodología: Se propagaron in vitro brotes provenientes de ápices apicales extraídos de hijos de «plátano bocadillo» M. acuminata; los ápices se cultivaron en un medio de iniciación semisólido de Murashige y Skoog, que contenía 4 mg/l tiamina-HCl, 0,5 mg/ l de ANA, 0,5 mg/l de IBA y 0,5 mg/l de 6-BAP y pH ajustado a 5,8 y 1 g/l de carbón activado y luego en un medio de multiplicación con cuatro tratamientos hormonales: (1) 0,3 mg/l de ácido naftalenoacético (ANA)+1 mg/l de bencilaminopurina (6-BAP), (2) 0,5 mg/l de ANA+1,5 mg/l de BAP, (3) 1 mg/l de ANA+3 mg/l de 6-BAP, (4) 1 mg/l de ANA+3 mg/l de 6-BAP+2 mg/l de ácido giberélico (AG3). Resultados: A los 90 días, el número de brotes y tamaño de los brotes por explantes fue: 25,8±0,9 brotes y longitud del brotes 8,5±0,2 cm y número de raíces 3,8±0,1 y longitud de las raíces 2,1±0,4 cm. La mejor combinación de los reguladores de crecimiento fue de 1 mg/l de ANA y 3 mg/l de 6-BAP, lo cual indica que es necesaria la presencia de la auxina y citoquinia para la brotación. El enraizamiento fue in vitro y a los 90 días las plantas tenían en promedio 5,8±0,4 raíces y longitud de raíz 3,2±0,3 cm. Los brotes se formaron y enraizaron directamente del explante. Las plantas enraizadas se transfirieron al campo de forma exitosa. Conclusiones: El plátano bocadillo se puede multiplicar de manera masiva, siendo la combinación de los reguladores de crecimiento, 6-bencilamino purina (6-BAP) y ácido naftalenacético (ANA) la que arrojó los mejores resultados con 1 mg/l de ANA y 3 mg/l de 6-BAP como las concentraciones más efectivas.
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Citas
Aguilar M.1993. Micropropagacion in vitro de plátano (Musa AAB) y costo del establecimiento en el laboratorio de la sede regional de San Carlos, ITCR. Tesis Bach. Ing. Agrónomo. Santa Clara: ITCR; 40 p.
Aguilar ME, Ortiz JL, Sandoval J. 2008. Embriogénesis somática en plátano y banano: perspectivas y limita- ciones. Boletín Técnico/CATIE, N° 27. Turrialba: CATIE; 50 p.
Angarita A, Pérez M. 1984. Avances del proyecto Estudios orientados al control de la Sigatoka negra en plátano y banano. Segundo informe Colciencias (RF1000-4-36-83). 60 p.
Aular J, Cáceres M. 2011. Consideraciones sobre la producción de frutas en Venezuela. Rev Bras Fruticultura. 3 (1): 187- 98.
Castro D, Días J, Montoya N. 2002. Propagación clonal de bananos en birreactores de inmersión temporal. In: Acorbat. Memorias XV reunión realizada en Cartagena de Indias, Colombia, 27 de octubre al 2 de noviembre de 2002. Medellín, Colombia. Asociación Colombiana de Bananeros (AUGURA); p 44-8.
Colmenares M, Giménez C. 2003. Multiplicación in vitro Musa ssp. mediante el sistema de inmersión temporal. p. 468- 77. Consultado septiembre de 2014. URL disponible en: www.revfacagronluz.org-ve
Grisales F. 1994. Técnica rápida de multiplicación de plátano en Colombia. INFOMUSA. 3 (2): 7.
Hoyos JL, Román PC, Velasco JR. 2008. Evaluación del efecto de diferentes concentraciones de fitohormonas en la propagación de plátano dominico hartón (Musa AAB Simmonds). Facul Cien Agropec. 6 (2): 99-104.
Hoyos J, Perea R, Velasco R. 2008. Evolución del efecto de diferentes concentraciones de fitohormonas en la micro- propagación de plátano dominico hartón (Musa AAB Simmonds). Biotecnología en el sector agropecuario y agroindustrial. 6 (2): 7-18.
Murashige T, Skoog F. 1962. A revised medium for rapid growth and bioassays with tabacco tissue cultures. Physiol Plant. 15: 473-97.
Ortega DF, Tamayo AC, Calderón J, Galván R. 2011. Establecimiento aséptico en la micropropagación in vitro de banano Williams AAA subgrupo Cavendish. Tierra Tropical. 7 (2): 205-20.
Pérez OP, García L, Bermúdes I, Veitia V, Romero C. 2002. Manejo hijuelos y ápices de cultivar de Musa spp. para iniciar la micropropagación y comportamiento durante seis cultivares in vitro. Biotecnol Veg. 2 (2): 77-81.
Pérez Z, García LB, Sarria Y, Clavero J. 2002. Alternativa para la propagación in vitro del cultivar hibrido FHIA-20. InfoMusa 8 (20): 35-8.
Pérez MB, Medero VV, Torres MD, López JT, Santos AP, Rayas AC, et al. 2011. Nueva alternativa para la micropro- pagación en inmersión temporal del cultivar del plátano vianda INIVITPV 2011(AAB). Rev Colomb Biotecnol. XV (1): 98-107.
Ramírez M, Lindorf H, García E. 2008. Cambios morfo- anatómicos en los ápices y del vástago y de la raíz del banano Williams (Musa sp. AAA) bajo distintas concen- traciones de N6- bencil Adenina. J Agricult Univ Puerto Rico. 92 (1-2): 53-72.
Ríos G, Añez M, Ramírez M, Bracho M, Araújo D, Suárez H, et al. 2013. Cultivo in vitro de yemas tratadas con bencila- denina proveniente de cormos enteros o seccionados de plátano «Cambur Manzano». Bioagro. 25 (2): 137-42.
Sandoval J, Brenes G, Pérez L. 1991. Micropropagación de plátano y banano (Musa AAA, AAB) en el CATIE. Serie técnica, informe técnico. Turrialaba: CATIE N° 186; 29 p.
Sandoval J, Müller L. 1985. Influencia del tamaño del explante en la propagación in vitro de cuatro cultivaciones de Musa. VII Reunión de la ACORBAT. San José, Costa Rica; vol. 21. p. 87-97.
Sepúlveda N, Murillo M, Medina M. 2008. Propagación in vitro de musáceas del Chocó a partir de meristemos radiculares. Revista Universidad Tecnológica del Chocó: Investi- gación, Biodiversidad y Desarrollo 27 (1): 96-9.
Silva A, Trujillo I, Vidal M, Pérez V. 2009. Evaluación de la inducción de variabilidad genética en cambur manzano (Musa AAB) a través de marcadores RAPD. Agron Trop. 59 (4): 413-22.
Silva A, Trujillo G, Salazar E. 2010. Proliferación in vitro de brotes de plantan hartón (Musa AAB, subgrupo plátano CV hartón). Biotecnol Veg. 4 (6): 220-30.
Simmonds NW. 1962. The evolutions of bananas. London: Longmans; 170 p.
Simmunds NW. 1973. Los plátanos. Barcelona: Blume; 39 p.
Simmunds NW, Sherphered K. 1955. Taxomony and origen of the cultivated banana. J Linn Soc Lond Bot. 55: 302-12. Soto M. 1992.
Bananos. Cultivos y comercialización. 2a ed.
San José: Litografía e imprenta LIL. 640 p.
Tezenas DMH. 1985. Le bananier plantain. Malsone. Paris: Uve y Larouse; 143 p.
Vuylsteke D, De Lange E. 1988. Shoot-tip propagation, conservation y distribution of Musa germplasm. Rome: IBPGR; 55 p.
